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德国分子生物学研究所开发BreakTag技术揭示DNA断裂特征
- 关键词:
- 来源:
- Nature Biotechnology
- 全文链接:
- //agri.nais.net.cn/topic/downloadFile/50ca8097-6646-4af5-b7e6-c982dd947df3
- 来源地址:
- https://doi.org/10.1038/s41587-024-02238-8
- 资源所属:
- 农业生物技术专题
- 类型:
- 学术文献
- 语种:
- 英语
- 原文发布日期:
- 2024-05-13
- 摘要:
- 2024年5月13日,Nature Biotechnology在线发表了德国分子生物学研究所Vassilis Roukos、Petra Beli团队合作的研究成果:‘Linking CRISPR–Cas9 double-strand break profiles to gene editing precision with BreakTag’,本文介绍了一种名为BreakTag的新方法,用于全面分析CRISPR-Cas9诱导的DNA双链断裂(DSB)及其末端结构,以探究Cas9切割位点的决定因素。研究发现大约35%的SpCas9 DSB是错位的,这种错位切割与精确的、模板化的单碱基插入密切相关,从而展示了一种基于切割结构的gRNA设计策略,可以用于纠正临床相关的致病性单碱基缺失。BreakTag方法简介高效末端修复与加A尾:首先对Cas9处理后的基因组DNA进行末端修复和加A尾处理,准备进行接头连接。接头连接:将带有独特分子标识符(UMI)和样本条形码的接头连接到修复后的DNA末端。Tn5转座酶标签化:使用Tn5转座酶对连接了接头的DNA片段进行标签化,生成适合测序的片段。PCR扩增:对标签化的DNA片段进行PCR扩增,富集DSB片段并生成适合测序的文库。数据处理与分析:使用BreakInspectoR管道分析BreakTag数据,识别和计数Cas9诱导的DSB。BreakTag表征Cas9切割特性。研究团队设计并合成了约3500个sgRNA,这些sgRNA目标包括超过150000个内源性位点。利用SpCas9和多种工程化Cas9 变体(如 HiFiCas9、xCas9 等)对这些目标位点进行基因编辑,诱导DNA双链断裂。实验结果表明,钝端(blunt ends)占 61.57%;错位端(staggered ends)占 35.04%。图2显示了所有目标位点(on-target 和 off-target)以及 NGG PAM 位点的钝端和错位端的分布。错配的存在显著增加了错位切割的比例。,随着错配数的增加,钝端率下降,这表明部分互补的DNA和gRNA序列更容易产生错位切割。研究发现,Protospacer的特定位置的碱基组成对错位切割有显著影响。以上表明,部分互补的DNA和gRNA序列会影响Cas9的切割模式,偏向于产生错位的DSB。不同的Cas9变体在切割结构上表现出显著差异。例如,HiFiCas9和xCas9变体显示出更高的错位切割倾向。这表明,通过对Cas9蛋白的工程化改造,可以调控其切割模式,从而影响基因编辑的结果。
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